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PCR實(shí)用技巧
更新時間:2014-12-08 點(diǎn)擊次數(shù):2370次

PCR需要注意的一些問題
擴(kuò)增長目的片段當(dāng)擴(kuò)增大于5kb的目的片段時,可以使用用于超長PCR的酶或酶混合物以獲得*產(chǎn)量)。Taq DNA聚合酶并不能有效擴(kuò)增較長目的片段(大于5kb),可能是因?yàn)槠淙鄙?'-5'外切核酸酶活性,不能糾正dNTP錯誤摻入。錯誤配對的延伸幾率大大降低,減少了較長產(chǎn)物的產(chǎn)量。將Taq DNA聚合酶同帶有3'-5'外切核酸酶活性的熱穩(wěn)定DNA聚合酶混合,可以擴(kuò)增zui高為30kb的目的片段。Platunum Pfx DNA聚合酶(帶有3'-5'外切核酸酶活性)也可以擴(kuò)增較長產(chǎn)物(≤12kb)。除了選用正確的熱穩(wěn)定DNA聚合酶,較長產(chǎn)物的擴(kuò)增還需要改變標(biāo)準(zhǔn)步驟的延伸時間、變性時間、緩沖液pH。按1分鐘/kb增加延伸時間使聚合酶完成合成。一般對于有效的超長PCR,延伸溫度會低至68℃。因?yàn)檠由鞎r間較長,對于20kb的模板高達(dá)20分鐘,所有使用較高起始pH的緩沖液。如果pH將至低于pH7.0,DNA會脫嘌呤。為了防止模板損傷,在每個循環(huán)將94℃變性時間減少到30秒或更短,將在擴(kuò)增前溫度增加到94℃變性溫度的時間限制為小于等于1分鐘。引物使用標(biāo)準(zhǔn)方法所使用的同樣的方法設(shè)計(jì),使用18到24個堿基得到較好的產(chǎn)量。防止殘余(Carry-over)污染PCR易受污染的影響,因?yàn)樗且环N敏感的擴(kuò)增技術(shù)。小量的外源DNA污染可以與目的模板一塊被擴(kuò)增。當(dāng)前一次擴(kuò)增產(chǎn)物用來進(jìn)行新的擴(kuò)增反應(yīng)時,會發(fā)生共同來源的污染。這稱之為殘余污染。從其他樣品中純化的DNA或克隆的DNA也會是污染源。可以在PCR過程中使用良好的實(shí)驗(yàn)步驟減少殘余污染。使用抗氣霧劑移液管的阻止氣霧劑進(jìn)入eppendorf管內(nèi)。為PCR樣品配制和擴(kuò)增后分析設(shè)計(jì)隔離的區(qū)域,在準(zhǔn)備新反應(yīng)前更換手套。總是使用不含有模板的陰性對照檢測污染。使用預(yù)先混合的反應(yīng)成分,而不是每個反應(yīng)的每個試劑單獨(dú)加入。一種防止殘余污染的方法是使用尿嘧啶DNA糖基化酶(UDG)。這種酶(也稱為尿嘧啶-N-糖基化酶或UNG)移除DNA中的尿嘧啶。在擴(kuò)增過程中將脫氧尿嘧啶替換為胸腺嘧啶使得可以把前面的擴(kuò)增產(chǎn)物同模板DNA區(qū)分開來。因?yàn)榍懊娴臄U(kuò)增產(chǎn)物對UDG敏感,所有可以在PCR前對新配制的反應(yīng)用UDG處理以破壞殘余產(chǎn)物。PCR產(chǎn)物純化殘余反應(yīng)成分包括抑制克隆,測序和標(biāo)記反應(yīng)的引物,核苷和熱穩(wěn)定聚合酶。因此,一般在進(jìn)一步操作之前需要純化PCR產(chǎn)物。包括多次酚:氯仿抽提及隨后的PEG沉淀或異丙醇沉淀的純化步驟雖然有效,但是耗費(fèi)時間,且會丟失產(chǎn)物。Maligen Rapid PCR Purification System在10分鐘內(nèi)從反應(yīng)成分中純化PCR產(chǎn)物。它對80bp到10kb很大范圍的PCR片段都有效,有效回收95%的原有樣品(圖26)。擴(kuò)增后PCR片段的純化使用1.2μg引物(泳道1)或3.5μg引物(泳道2)。峰值包含約1μg擴(kuò)增產(chǎn)物的完整PCR體系。引物36到40堿基長。將峰值反應(yīng)純化,對純化前(泳道A)和純化后(泳道B)的洗脫液水相使用瓊脂糖凝膠電泳分析。部分PCR產(chǎn)物可能需要通過凝膠電泳,和影響克隆和測序的非特異性PCR產(chǎn)物分離純化出來。使用Maligen Gel Extraction System將目的產(chǎn)物從瓊脂糖中純化出來,這是一種基于硅土的,從凝膠中快速純化DNA片段的技術(shù)。


滬公網(wǎng)安備 31011802001676號

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