游離脂肪酸（FFA）含量檢測試劑盒說明書 |
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游離脂肪酸（FFA）含量檢測試劑盒說明書 可見分光光度法 注意：正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定。 規格：50T/48S 產品內容： 提取液：液體 50 mL×1 瓶，室溫保存。 試劑一：自備。實驗前一天，取一個玻璃瓶，按照正庚烷：無水甲醇：氯仿=24:1:25 的比例配置（自備），蓋緊后混勻，室溫保存。 試劑二：液體 16 mL×1 瓶，室溫保存。 試劑三：粉劑×2 瓶，4℃保存。臨用前每瓶加入 32mL 無水乙醇充分溶解，4℃可保存一周。標準品：粉劑×1 支，10mg 棕櫚酸，室溫保存。臨用前把試劑轉移到 10 mL 玻璃瓶中，加入 7.8 mL 氯仿充分溶解，即為 5μmol/mL 的棕櫚酸標準溶液。 產品說明： FFA 既是脂肪水解的產物，又是脂肪合成的底物。血清中 FFA 的濃度與脂類代謝、糖代謝、內分泌功能有關。 FFA 與銅離子結合形成脂肪酸銅鹽，并溶于氯仿；利用銅試劑法測定銅離子含量，即可推算出游離脂肪酸含量。 自備儀器和用品： 研缽、冰、臺式離心機、可見分光光度計、1mL 玻璃比色皿、可調式移液槍、一個 40mL 玻璃瓶、一個 10 mL 玻璃瓶、正庚烷、無水甲醇、氯仿（三氯甲烷）、無水乙醇和蒸餾水。 操作步驟： 一、樣品中 FFA 提取： 1、血清中FFA 測定：將所取血液，室溫靜置 1 h 后，于 4 ℃離心機 3500 rpm 離心 15min，取上層血清置于-20℃冰箱保存，待測。 2、組織中 FFA 含量測定：組織用生理鹽水沖洗干凈后，用吸水紙吸取表面水分，稱取約 0.1g，加入 1.0 mL 提取液，勻漿后，8000rpm，4℃離心 10min，取上清液，待測。 二、測定： 1.分光光度計預熱 30 min 以上，調節波長到 550 nm，無水乙醇調零。 2.試劑二在 37℃水浴中預熱 30 min 以上。 3.標準品的稀釋：將標準品用氯仿稀釋成 1、0.8、0.6、0.4、0.2、0.1、0.05μmol/mL。 4.按下表在 1.5mL 離心管中加入相應試劑 對照管測定管空白管標準管 蒸餾水（μL）50 樣本（μL）50 氯仿（μL）50 標準品（μL）50 試劑一（μL）500 試劑二（μL）200 充分振蕩 10min 后，3000rpm，離心 10min 上層溶液（μL）200 試劑三（μL）800 充分振蕩 2min 后，靜置 15min，于 550 nm 下測吸光值，分別記為 A 對照管、A 測定管、A 空白管、A 標準管。（對照管和空白管各只做一管） 三、FFA 含量計算： 1.標準曲線的繪制： 以標準溶液的濃度為 x 軸，以ΔA 標準（ΔA=A 標準管-A 空白管）為 y 軸，繪制標準曲線，得到方程 y=kx+b。將ΔA（ΔA=A 測定管-A 對照管）帶入方程得到 x。 2.血清中 FFA 含量計算 FFA（μmol/L）=1000x 3.組織中 FFA 含量計算 （1）按樣本蛋白濃度計算 FFA 含量（μmol/mg prot）=x×V 樣總÷（Cpr×V 樣總）=x÷Cpr （2）按樣本鮮重計算 FFA（μmol/g 鮮重）=x×V 樣總÷W V 樣總：上清液總體積，1 mL；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣品鮮重，g。1000：單位換算系數，1L=1000mL。 注意事項： (1)試劑三配制應盡量晚配，可在操作到加入試劑二時，再配制試劑三。 (2)必須保證每管的震蕩頻率及時間一致。 (3)盡量在 30min 內完成測量，并且測完后要密封好再丟棄。 (4)因所用試劑多數為有機溶劑，同一支吸頭多次吸取會造成體積不準確，建議更換吸頭。 從2011年開始我們致力于在生命科學領域、生物醫學實驗技術及論文潤色服務，協助客戶各類實驗服務及論文潤色十多年，是您值得信賴的科研合作伙伴! 如果您受時間、試驗條件等限制而無法完成您的課題研究，歡迎您與我們聯系。
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